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SD大鼠最新视觉报道_十大最吓人的龟(2024年12月全程跟踪)

内容来源：飘花网电影所属栏目：热点更新日期：2024-11-30

SD大鼠

阿尔茨海默病大鼠模型建立及行为学检测 𐟐�补ž‹建立：采用SD大鼠，通过1%戊巴比妥钠40/g腹腔内注射麻醉，固定于脑立体定位仪上。根据大鼠脑立体定位图谱，以前囟为零起点，前囟后3.5 mm处为穿刺点，中线右侧旁开2mm，使用牙科钻钻开颅骨。采用微量注射器自脑表面垂直进针3mm，即(AP= -3.5 mm, ML=2.0 mm, DV=3.0 mm)，双侧海马CA1区缓慢匀速注射A-40各10  (1 )，留针5 min，退针后缝合伤口。 𐟒‰ 造模后3天，开始尾静脉注射生理盐水，大鼠每只给药100/次/d，连续给药21天。 𐟧頨ጤ𘺥�〦𕋯𜚊在给药后21天，进行Morris水迷宫试验，分为定位航行实验和空间探索实验。定位航行实验：大鼠连续接受5天训练，每天4次，每次时间间隔30min，记录下大鼠从4个入水点和入水并找到平台所需要的时间，即逃避潜伏期。4次潜伏期的平均成绩作为当日的最终结果。空间探索实验：实验第6天，撤去平台，从距离平台的最远端入水后，将大鼠放入水中，记录下30s内大鼠的游泳轨迹，观察分析大鼠在目标象限的停留时间及穿越平台的次数。 𐟧젧𛄧𛇧—…理学：尼氏染色：海马组织固定后石蜡切片，进行尼氏染色，观察海马区神经细胞形态和数量。光学显微镜下计数视野下每组大鼠同一部位的神经元数量。免疫荧光染色：观察海马区A-40染色情况。荧光显微镜下计数视野下每组大鼠同一部位的阳性斑块数量。 TUNEL染色：观察神经元凋亡情况。荧光学显微镜下计数视野下每组大鼠同一部位的阳性染色数量。 𐟔젦 ‡志因子水平： RT-qPCR检测：收集海马组织，提取RNA，反转录cDNA，PCR检测caspase-3，Bcl-2和Bax的表达。 Western-blot检测：收集海马组织蛋白，检测active-caspase-3，Bcl-2和Bax的蛋白表达。

坐骨神经损伤大鼠模型制备及组织病理学研究 𐟐�€ 模方式：通过夹闭坐骨神经干来诱导坐骨神经损伤。 𐟐�Š觉饓系：选用SPF级SD大鼠，雄性，8周龄。 𐟐�ꌥˆ†组：分为对照组、模型组、阳性药物组以及受试药物低中高剂量组。 𐟐�ꌥ‘覜Ÿ：整个实验持续4周。 𐟔꠩€ 模方法：对雄性大鼠进行腹腔注射麻醉。将大鼠固定在鼠固定架上，暴露左下肢并剪掉毛发。用碘酒和酒精消毒三次，在左侧股后正中切开长约6-8mm的切口，暴露皮下肌肉。用止血钳钝性分离股二头肌、半腱肌、半膜肌，分离出白色、粗大的坐骨神经。在距坐骨结节6-8mm处用大止血钳夹闭坐骨神经干，挤压5秒钟后松开，间隔10秒后再夹闭5秒钟，再放松10秒，第三次再夹闭5秒。神经干挤压伤宽度约3mm。用9-0无创缝线标记后，将坐骨神经送回原位，缝合创口。假手术组大鼠仅切开皮肤暴露左侧坐骨神经但不进行钳夹，相同方法标记后缝合。 𐟧ꠥŽ期取材：将取出的动物饲养一周后，注射水合氯醛麻醉大鼠。将鼠固定在大鼠固定架上，行胸、复联合切口，切断肋骨，剪断膈肌，暴露心脏。用16号针头由左心尖刺入左心室，用软静脉留置导管沿左心室经主动脉瓣插入主动脉，剪开右心耳。先用0.9%生理盐水250ml快速冲洗组织内血液，再用4%多聚甲醛固定液快速推注100ml，再缓慢推注100ml，直至鼠尾巴翘起，身体逐渐僵硬，颜色变白为止。灌注后，立即将身体僵硬的鼠固定在手术台上，沿脊柱正中切开，暴露及分离背部肌肉，切断T12 L1水平脊柱、脊髓。沿坐骨神经走行切腰4、腰5、骶1段脊髓和包括挤压伤在内的上下各2mm的坐骨神经。同法切取假手术组的相应部位等长标本。 𐟔젧𛄧𛇧—…理学检查：坐骨神经组织包埋切片后进行Loyez苏木精染色，光镜下观察再生髓鞘的情况。坐骨神经组织切片脱蜡，苏木精复染，计数凋亡细胞。利用电镜在超微结构水平观察坐骨神经组织中的自噬情况。

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动物实验给药剂量换算全攻略刚开始做动物实验时，连最基本的给药剂量都搞不清楚，真是让人头疼。经过一番折腾和查找，终于搞明白了！为了帮助大家少走弯路，我把整个过程整理了一下，特别适合SD大鼠的实验。希望对你们有帮助！从人到动物的剂量换算 𐟧 首先，我们得知道人和动物之间的剂量换算关系。比如说，人的给药剂量是100mg/mⲯ𜌩‚㦀Ž么算到大鼠呢？其实很简单，按照体重比例来算。比如大鼠的体重一般是人的6.3倍，所以大鼠的给药剂量就是100mg/mⲠ* 6.3 = 630mg/mⲣ€‚ 具体步骤 𐟓 计算每公斤人的给药剂量：这个很简单，就是把人的给药剂量除以体重。比如100mg/mⲩ™䤻巰kg，得到2.47mg/kg。换算到大鼠：大鼠的给药剂量是人的6.3倍，所以大鼠的给药剂量就是2.47mg/kg * 6.3 = 15.561mg/kg。注意事项 ⚠️ 一般来说，我们按照说明书里的剂量来折算动物的给药剂量。如果有已知的文献或者相似药物的剂量参考，那就更好了。我们上面只算了人和大鼠之间的剂量换算，实际上动物和动物之间的剂量也可以换算。小贴士 𐟒ኊ在做实验的时候，记得多查查文献，尤其是那些已经发表的实验结果，这样可以避免很多麻烦。希望这些小技巧能帮到你们！如果还有什么不明白的地方，欢迎留言讨论哦！𐟘Š

大鼠骨关节炎模型的建立与检测方法详解 𐟐�ꌥ‡†备选择健康、6-8周龄、雄性、体重在180-200g的SPF级SD大鼠。准备手术所需的手术刀片、眼科镊子等器械。 𐟔ꠦ‰‹术操作麻醉与固定：使用腹腔麻醉法麻醉大鼠，并固定其四肢。剃毛与消毒：对手术区域进行剃毛，并用消毒液进行术区消毒。手术切口：选择膝关节正中切口，在髌韧带部上下各1.5cm处，切口约3cm。暴露关节：于右侧髌韧带内侧，关节间隙上0.5cm处开始切断股内侧肌，延伸到髌韧带胫骨止点内侧，下刀直至触及股骨。彻底分开肌肉后用镊子提起髌韧带，用刀切开关节囊，向外脱位髌骨。改良Hulth法操作：脱位后选膝关节屈曲位，注意髌下囊位置尽量不要清理，易出血影响视野。切断内侧半月板前角，分离并拉出内侧半月板前半部。在极度屈曲外旋位用尖刀由内侧探入关节间隙，由内向外挑断前交叉韧带。注意保护软骨组织，切断前交叉韧带后向前拉胫骨平台，切除剩余内侧半月板。关节冲洗，放置抗生素粉末，还纳髌骨。缝合与护理：缝合手术切口，注意大鼠嗜血，表面血迹清理干净。外层用较粗线缝合，不做外敷。术后注意对大鼠的护理，观察其恢复情况。 𐟧ꠦ补ž‹检测抽屉试验：在剪断前交叉韧带后，进行抽屉实验。抽屉实验是通过手动前后推拉胫骨，观察胫骨相对于股骨的移动程度来判断前交叉韧带是否完全断离。如果前交叉韧带完全断离，胫骨相对于股骨的移动范围将明显增大。病理检测：通过HE、甲苯胺蓝、藏红固绿染色等方法观察关节软骨的形态学变化。通过番红O染色确定关节炎症情况。免疫荧光及RT-PCR检测：使用免疫荧光及RT-PCR技术观察技术观察和检测关节软骨的Ⅱ型胶原蛋白、MMP13等基因和蛋白的表达情况。

半分钟完成SD大鼠脊髓损伤模型取材，快来一起学习！「神经科学」动物疾病模型 #实验室日常威斯腾生物的微博视频

𐟐�穼解剖实验汇报𐟔슰Ÿ” 在本次大鼠解剖实验中，我们深入探索了SD大鼠的生理结构。𐟔꠩€š过精心设计的实验步骤，我们详细了解了SD大鼠的各个器官和系统，包括但不限于消化系统、呼吸系统、循环系统等。𐟔슊𐟔 实验过程中，我们严格按照科学方法进行操作，确保数据的准确性和可靠性。𐟓Š 通过观察和记录大鼠的解剖结构，我们得出了许多有价值的结论，为后续的科学研究提供了有力的支持。𐟓š 𐟔 需要注意的是，本次实验仅供学术交流使用，不可用于商业用途。𐟚렦ˆ‘们承诺，所有实验数据和结果仅供学术研究之用，绝不外泄。𐟔’ 𐟔 再次强调，本次实验汇报的目的是为了分享我们的研究成果，促进学术交流，并无任何商业意图。𐟒ᠦ„Ÿ谢大家的关注和支持，期待与您在学术道路上继续探索。𐟌Ÿ

疾病背景：研究尿酸型肾结石模型可以深入理解尿酸结石的形成机制、病理生理过程以及潜在的治疗靶点，可以详细观察肾脏在不同病理状态下的变化，包括细胞损伤、炎症反应、纤维化等过程，从而揭示慢性肾病的分子机制。从而推动新的治疗方法和药物的研发。同时尿酸肾结石模型也可用于评估现有药物的疗效和测试新药物或治疗方法的效果和安全性。研究人员可以在早期阶段筛选出有潜力的药物候选物，并评估其对肾脏功能的影响，加速药物从实验室到临床的转化过程。研究尿酸型肾结石模型对于改善患者预后、减轻医疗系统压力具有重要意义。随着科学技术的进步和跨学科合作的加强，未来有望在肾脏疾病管理和治疗方面取得更多突破。动物造模方法： SD大鼠（性别不限，6-8周，220-250g）将腺嘌呤干粉在研钵中充分研磨，生理盐水配成混悬液。按照200mg/kg的剂量连续灌胃两周。从第三周开始隔天灌胃直至第八周。（4）期间观察老鼠的状态，若老鼠状态较差，可降低药物剂量。（5）第四周可采血检测血生化尿酸结果，判断是否形成高尿酸血症。 8-10w成模#皮诺飞生物# #SD大鼠##SD大鼠尿酸型肾结石实验# #皮诺飞生物实验动物模型# #疾病动物造模方法# #实验外包公司#

大鼠2型糖尿病模型构建与鉴定全攻略大鼠2型糖尿病（T2DM）模型构建：造模前生理指标检测 𐟐튥𐆦‰€有SD大鼠过夜禁食（>12小时），隔天进行以下生理指标的检测：使用电子天平对每只大鼠进行称重，记录基础体重数据。使用血糖仪测定每只大鼠的空腹血糖（FBG）含量，记录基础血糖值。构建大鼠T2DM模型 𐟏劤𝿧”詫˜糖高脂饲料（含67.5%的常规饲料、10%猪油、20%蔗糖和2.5%胆固醇）喂养4周，然后更换成清洁级标准维持鼠料。将溶解于0.1 mM柠檬酸盐缓冲液（pH=4.2）的链脲佐菌素（STZ）按照20 mg/kg的剂量，左下腹腔注射，每天1次，持续3天。 STZ注射完毕即造模完成（记作0周），待造模1、2、4周后鉴定大鼠T2DM造模稳定情况。大鼠2型糖尿病（T2DM）模型鉴定 𐟔스𝓩‡水平监测 𐟓Š 待所有SD大鼠T2DM模型构建结束后，使用电子天平对每只大鼠进行称重，每周一次记录体重数据。空腹血糖（FBG）测定 𐟩𘊥𞅦‰€有SD大鼠T2DM模型构建结束后，使用血糖仪检测造模1、2、4周后大鼠的FBG，即尾尖采血测空腹血糖水平。口服葡萄糖耐量实验（OGTT） 𐟍‡ OGTT 实验检测造模1、2、4周后大鼠血糖水平，具体操作如下：检测前将所有实验大鼠禁食12小时，于OGTT检测当日称重并尾尖采血，测空腹血糖作为0分钟血糖。然后使用葡萄糖溶液灌胃（2 g/kg），在灌胃后30分钟、60分钟、120分钟测量大鼠血糖并记录。

组织获取 ⷠ取SD大鼠一只，麻醉致死，取肿瘤0.5g组织，置于无菌装有4℃完全培养液的培养皿中。(一小时内分离肝细胞)。 ▶️▶️将上述组织用含有双抗的培养液浸泡漂洗20分钟，并用无血清培养液反复冲洗干净。用眼科剪去除组织块中的脂肪、神经组织、结缔组织和坏死组织）；酶消化/机械分离 ⷧ”襉ꥈ€将取样切割成1mm⳥𗦥𓧚„小块，用4℃ D-Hank's液洗2次，以除去在剪碎组织过程中产生的碎片。加入10倍体积组织量(2ml)并预热到37℃的0.05%完全DMEM配置的四型胶原酶，放入37℃单细胞悬液仪，消化30min左右（内置程序选择），消化完成后，用移液器吹打。200目滤网过滤，再用2ml消化终止液，得到约4ml细胞悬液。洗涤和重悬(去红) ⷧ”膩coll去除红细胞。分离后的细胞悬液需要离心纯化，50g离心10分钟3次纯化，文献报道50g离心力下，得到的基本都是肝细胞#单细胞悬液制备# #流式细胞术# #研磨仪# #实验室日常# #研究生#

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